Ribavirin alkalmazása a szőlő vírusmentesítésében

Szerzők

  • Turcsán Mihály NAIK Szőlészeti és Borászati Kutatóintézet Kecskeméti Kutató Állomás, e-mail: turcsan.mihaly@szbki.naik.hu (levelezőszerző)
  • Demián Emese NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet
  • Oláh Krisztina NAIK Szőlészeti és Borászati Kutatóintézet Kecskeméti Kutató Állomás
  • Várallyay Éva NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet https://orcid.org/0000-0002-9085-942X
  • Oláh Róbert NAIK Szőlészeti és Borászati Kutatóintézet Kecskeméti Kutató Állomás

Kulcsszavak:

szőlő vírusmentesítés, ribavirin, kemoterápia, mikroszaporítás

Absztrakt

A patogénmentes szőlő szaporítóanyag előállításnak fontos szerepe van abban, hogy megakadályozza a fertőző betegségek terjedését. A ribavirin egy kemoterápiában alkalmazott antivirális szer, amelynek használata több növényfaj számos RNS vírusa ellen hatásos volt. Kísérletünk során a kemoterápia szőlő vírusokra gyakorolt hatását vizsgáltuk több szőlőfajtán. A ribavirin kezelés alkalmas volt a Szőlő rupestris faszöveti barázdáltság vírus (GRSPaV), a Szőlő Pinot gris vírus (GPGV) és a Szőlő Syrah vírus-1 (GSyV-1) eliminálására Vitis vinifera cv. Sárfehér növények esetén, ezért a kezelést további, különböző vírusokkal fertőzött szőlőfajta esetében is elvégeztük, hogy megvizsgáljuk a módszer hatékonyságát.

Hivatkozások

Chauhan, P., Singla, K., Rajbhar, M., Singh, A., Das, N. and Kumar, K. 2019. A systematic reviewof conventional and advanced approaches for the control of plant viruses. Journal of Applied Biology & Biotechnology 7. 4. 89–98. https://doi.org/10.7324/JABB.2019.70414

Crotty, S., Cameron, C. and Andino, R. 2002. Ribavirin's antiviral mechanism of action: lethal mutagenesis?. Journal of molecular medicine, 80. 2. 86–95. https://doi.org/10.1007/s00109-001-0308-0 PMid:11907645

Farkas, E. M., Czotter, N., Lózsa, R., Dula, T., Ember, I., Várallyay, É. and Szegedi, E. 2014. Conventional PCR primers for the detection of grapevine pathogens disseminated by propagating material. International Journal of Horticultural Science, 20. 3-4. 69–80. https://doi.org/10.31421/IJHS/20/3-4/1139

Guta, I. C. and Buciumeanu, E. C. 2011. Grapevine chemotherapy for elimination of multiple virus infection. Romanian Biotechnological Letters, 16. 5.

Komínek, P., Komínková, M. and Jandová, B. 2016. Effect of repeated Ribavirin treatment on grapevine viruses. Acta virologica, 60. 4. 400–403. https://doi.org/10.4149/av_2016_04_400 PMid:27928920

Martelli, G. P. 2017. An overview on grapevine viruses, viroids, and the diseases they cause. In: Meng, B., Martelli, G., Golino, D. and Fuchs, M. (eds): Grapevine Viruses: Molecular Biology, Diagnostics and Management. Springer, Cham, Bari, 698. 21–46. https://doi.org/10.1007/978-3-319-57706-7_2

Massart, S., Candresse, T., Gil, J., Lacomme, C., Predajna, L., Ravnikar, M., Reynard, J.-S., Rumbou, A., Saldarelli, P., Škorić, D., Vainio, E. J., Valkonen, J. P. T., Vanderschuren, H., Varveri, C. and Wetzel, T. 2017. A Framework for the Evaluation of Biosecurity, Commercial, Regulatory, and Scientific Impacts of Plant Viruses and Viroids Identified by NGS Technologies. Frontiers in Microbiology 8. 45. https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.00045

Panattoni, A., Luvisi, A. and Triolo, E. 2013. Elimination of viruses in plants: twenty years of progress. Spanish Journal of Agricultural Research, 11. 1. 173–188. https://doi.org/10.5424/sjar/2013111-3201

San Pedro, T., Gammoudi, N., Peiró, R., Olmos, A. and Gisbert, C. 2017. Somatic embryogenesis from seeds in a broad range of Vitis vinifera L. varieties: rescue of true-to-type virus-free plants. BMC Plant Biology, 17. 1. 226. https://doi.org/10.1186/s12870-017-1159-3 PMid:29187140 PMCid:PMC5706158

Skiada, F. G., Maliogka, V. I., Katis, N. I. and Eleftheriou, E. P. 2013. Elimination of Grapevine rupestris stem pitting-associated virus (GRSPaV) from two Vitis vinifera cultivars by in vitro chemotherapy. European journal of plant pathology, 135. 2. 407–414. https://doi.org/10.1007/s10658-012-0097-z

Xu, Q. Wen, X. and Deng, X. 2004. A simple protocol for isolating genomic DNA from chestnut rose (Rosa roxburghii Tratt) for RFLP and PCR analyses. Plant Molecular Biology Reporter, 22. 3. 301–302. https://doi.org/10.1007/BF02773140

Zok, A., Oláh, R., Hideg, E., Horváth, V. G., Kós, P. B., Majer, P., Varadi, Gy. and Szegedi, E. 2010. Effect of Medicago sativa ferritin gene on stress tolerance in transgenic grapevine. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 100. 3. 339–344. https://doi.org/10.1007/s11240-009-9641-8

Letöltések

Megjelent

2020-03-06

Folyóirat szám

Évf. 24 Szám 1 (2020)

Rovat

Cikkek

License

Copyright (c) 2020 Turcsán Mihály, Demián Emese, Oláh Krisztina, Várallyay Éva, Oláh Róbert

Creative Commons License

This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

The articel is under the Creative Commons 4.0 standard licenc: CC-BY-NC-ND-4.0.  Under the following terms: You must give appropriate credit, provide a link to the license, and indicate if changes were made. You may do so in any reasonable manner, but not in any way that suggests the licensor endorses you or your use. You may not use the material for commercial purposes. If you remix, transform, or build upon the material, you may not distribute the modified material. You may not apply legal terms or technological measures that legally restrict others from doing anything the license permits.