A balatoni kősüllő (Sander volgensis, Gmelin, 1788) állomány hímivarsejt minőségének és mélyhűtésének vizsgálata az indukált szaporítás fejlesztése és a génbanki megőrzés céljából

Szerzők

  • Nagy Borbála Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Várkonyi Levente Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Fodor Ferenc Balatoni Halgazdálkodási Nonprofit Zrt., 8600 Siófok, Horgony u. 1.
  • Koltai Tamás Balatoni Halgazdálkodási Nonprofit Zrt., 8600 Siófok, Horgony u. 1.
  • Bodnár Ádám Balatoni Halgazdálkodási Nonprofit Zrt., 8600 Siófok, Horgony u. 1.
  • Molnár József Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Láng Levente Zete Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Izsák Tibor Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Staszny Ádám Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Ferincz Árpád Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Birkó-Sulyok Zita Katalin Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Urbányi Béla Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Szári Zsolt Balatoni Halgazdálkodási Nonprofit Zrt., 8600 Siófok, Horgony u. 1.
  • Bokor Zoltán Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd
  • Bernáth Gergely Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd

DOI:

https://doi.org/10.17205/SZIE.AWETH.2020.2.163

Kulcsszavak:

kősüllő, spermamélyhűtés, CASA, keltetőházi körülmények

Absztrakt

A kősüllő sperma mélyhűtése egyszerűbbé és gazdaságosabbá teheti a szaporítást, ezáltal elősegítheti a természetes populációk horgászati és természetvédelmi célú visszatelepítését egyaránt. Munkánk során 3 különböző kísérletet végeztünk sperma kinyerési (hagyományos fejés, katéter alkalmazása, fejés hígítóba és herepréselés) és mélyhűtési módszerek fejlesztésének céljából (N=39). A vizsgálatok során összehasonlítottunk 3 különböző hígítót (módosított Tanaka, csuka, glükóz), valamint két különböző méretű műszalmát (0,5 és 5 ml). A hímivarsejt progresszív motilitását a friss és a mélyhűtött mintákban egyaránt számítógépes spermavizsgáló rendszerrel (CASA) végeztük. Az eredmények alapján hatékony sperma kinyerési módszernek bizonyult a hagyományos és a katéteres fejés, valamint a herepréselés egyaránt, azonban a legnagyobb minta mennyiséget az utóbbi módszer eredményezte. Keltetőházi körülmények között igazoltuk az általunk kidolgozott mélyhűtési módszerek (módosított Tanaka hígító, 0,5 illetve 5 ml-es műszalma) alkalmazhatóságát a kősüllő sperma fagyasztása során.

Információk a szerzőről

  • Nagy Borbála, Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar, Akvakultúra és Környezetbiztonsági Intézet, Halgazdálkodási Tanszék, 2100 Gödöllő, Páter Károly út 1./ 2484 Agárd

    levelezőszerző
    nagy.borbala@mkk.szie.hu

Hivatkozások

Bernáth G., Csenki Zs., Bokor Z., Várkonyi L., Molnár J., Szabó T., Staszny Á., Ferincz Á., Szabó K., Urbányi B., Pap L. O., Csorbai B. (2018): The effects of different preservation methods on ide (Leuciscus idus) sperm and the longevity of sperm movement. Cryobiology, 81. 125–131. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2018.01.014

Bernáth G., Żarski D., Krejszeff S., Palińska‐Żarska K., Bokor Z., Król J., Kollár T., Kucharczyk D., Urbányi B., Horváth Á. (2015): Optimization of conditions for the cryopreservation of Eurasian perch (Perca fluviatilis Linnaeus, 1758) sperm. Journal of Applied Ichthyology, 31. 1. 94–98. https://doi.org/10.1111/jai.12740

Bernáth G., Várkonyi L., Szanati E., Molnár J., Kajtár A., Solymosi E., Urbányi B., Bokor Z. (2017): Practical improvement of pike (Esox lucius) sperm cryopreservation. Aquaculture Europe, Dubrovnik, Croatia, Október 17-20.

Bokor Z., Bernáth G., Várkonyi L., Molnár J., Láng L. Z., Tarnai-Király Zs., Solymosi E., Urbányi B. (2019): The applicability of large-scale sperm cryopreservation in wels catfish (Silurus glanis) optimized for hatchery practice. Aquaculture, 506. 337–340. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.03.064

Bokor Z., Horváth Á., Horváth L., Urbányi B. (2008): Cryopreservation of pike perch sperm in hatchery conditions. Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh, 60. 168–171. https://doi.org/10.46989/001c.20493

Bokor Z., Müller T., Bercsényi M., Horváth L., Urbányi B., Horváth Á. (2007): Cryopreservation of sperm of two European percid species, the Pikeperch (Sander lucioperca) and the Volga pikeperch (S. volgensis). Acta Biologica Hungarica, 58. 199–207. https://doi.org/10.1556/ABiol.58.2007.2.6

Bozkurt Y. (Eds.) (2019): Biological Research in Aquatic Science, 11–36. https://doi.org/10.5772/intechopen.77742

Glogowski J., Kwasnik M., Piros B., Dabrowski K., Goryczko K., Dobosz S., Kuzminski H., Ciereszko A. (2000): Characterization of rainbow trout milt collected with a catheter: semen parameters and cryopreservation success. Aquaculture Research, 31. 289–296. https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2000.00400.x

Holcik J. (2003): Changes in the fish fauna and fisheries in the Slovak section of the Danube River: a review. Annales de Limnologie-International Journal of Limnology, 39. 3. 177–195. https://doi.org/10.1051/limn/2003015

Horváth Á., Miskolci E., Urbányi B. (2003): Cryopreservation of common carp sperm. Aquatic Living Resources, 16. 5. 457–460. https://doi.org/10.1016/S0990-7440(03)00084-6

Hulak M., Rodina M., Linhart O. (2008): Characteristics of stripped and testicular northern pike (Esox lucius) sperm: spermatozoa motility and velocity. Aquatic Living Resources, 21. 2. 207–212. https://doi.org/10.1051/alr:2008022

Szabó G., Müller T., Molnár T. G., Sudár G., Zake Z., Hancz Cs. (2009): Különböző takarmányadagok hatása a kősüllő (Sander volgensis Gmelin 1788) növekedésére és testösszetételére intenzív nevelés mellett. Acta Agraria Kaposváriensis, 17. 1. 37–46.

Várkonyi L., Bokor Z., Molnár J., Fodor F., Szári Zs., Ferincz Á., Staszny Á., Láng L. Z., Csorbai B., Urbányi B., Bernáth G. (2018): The comparison of two different extenders for the improvement of large-scale sperm cryopreservation in common carp (Cyprinus carpio). Reproduction in Domestic Animals, 54. 3. 639–645. https://doi.org/10.1111/rda.13383

Letöltések

Megjelent

2020-12-28

Folyóirat szám

Rovat

Cikkek

Hogyan kell idézni

A balatoni kősüllő (Sander volgensis, Gmelin, 1788) állomány hímivarsejt minőségének és mélyhűtésének vizsgálata az indukált szaporítás fejlesztése és a génbanki megőrzés céljából. (2020). Animal Welfare, Etológia és Tartástechnológia (AWETH), 16(2), 163-169. https://doi.org/10.17205/SZIE.AWETH.2020.2.163