Mélyhűtött csuka (Esox lucius) spermából származó lárvák különböző növekedési és morfológiai paramétereinek vizsgálata rövidtávú lárvanevelés során
DOI:
https://doi.org/10.17205/SZIE.AWETH.2020.2.146Kulcsszavak:
csuka, spermamélyhűtés, lárvanevelés, lárvadeformitásAbsztrakt
Kísérletünkben csukaszaporítást végeztünk friss és három különböző módszerrel fagyasztott sperma [(polisztirol dobozban (p. doboz) 5 ml-es műszalma, valamint programozható fagyasztó berendezésben (CRF) 5 ml-es műszalma és 10 ml-es kriocső)] alkalmazásával. Keltetést követően közvetlen kelés után (kikelt), a nem táplálkozó lárvaszakasz végén és 5. napos táplálkozó lárvaszakaszban vizsgáltuk a lárvákat különböző fejlődési és növekedési paraméterek alapján. A testtömeg adatok elemzése során a kikelt p. doboz 5 ml (8,45±0,89 mg) és 10 ml-es kriocső 8,39±1,49 mg csoportja szignifikánsan magasabb értéket mutatott a kontroll (8,11±1,26 mg) és CRF 5 ml (7,87±0,85 mg) csoportnál. A testhossz adatok vizsgálata során a kikelt lárvastádiumban a kontroll (8,22±0,86 mm) és a p. doboz 5 ml (8,37±0,68 mm) csoportok szignifikánsan eltértek a CRF 5 ml (8,49±0,67 mm), valamint a kriocső (8,54±0,66mm) csoporttól. Az 5 napos táplálkozó lárvastádiumban a testtömeg és testhossz adatok alapján egyaránt magasabb értéket jegyeztünk fel a p. doboz 5 ml (17,38±2,25 mg; 14,83±0,88 mm); CRF 5 ml (17,58±2,18 mg; 14,71±0,69 mm) kriocső esetében (17,28±1,95 mg; 14,86±0,79 mm) a kontroll csoporthoz (16,48±2,04 mg; 14,52±0,82 mm) képest. A lárvamegmaradás vizsgálata során nem rögzítettünk szignifikáns eltérést a kontroll (69%) és a mélyhűtött csoportok (CRF 5 ml: 74%, kriocső 74%, p. doboz. 5 ml: 80%) között. A morfológia adatok elemzése során nem találtunk igazolható eltérést a lárvastádiumok kontroll és három mélyhűtött csoportjai között.
Hivatkozások
Alavi S. M. H., Rodina M., Viveiros A. T. M., Cosson J., Gela D., Boryshpolets S., Linhart O. (2009): Effects of osmolality on sperm morphology, motility and flagellar wave parameters in Northern pike (Esox lucius L.). Theriologenology, 72. 32–43. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2009.01.015
Ashwood-Smith, M. J. (1980): Low temperature preservation of cells, tissues and organs. [In: Ashwood-Smith and Farrant (eds.) Low Temperature Preservation in Medicine and Biology.] Pitman Medical Ltd. Tunbridge Wells. Kent. England. 19–44.
Babiak I. Glogowski J., Luczynski M. J., Kucharczky D., Luczynski M. (1995): Cryopreservation of the milt of the northern pike. Journal of Fish Biology, 46. 819–828. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1995.tb01604.x
Bernáth, G., Bokor, Z., Żarski, D., Várkonyi, L., Hegyi, Á., Staszny, Á., Urbányi, B., Ifj. Radóczi, J., Horváth, Á. (2016): Commercial-scale out-of-season cryopreservation of Eurasian perch (Perca fluviatilis) sperm and its application for fertilization. Animal Reproduction Science, 170. 170–177. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2016.05.005
Bernáth G., Várkonyi L., Szanati E., Molnár J., Kajtár A., Solymosi E., Urbányi B., Bokor Z. (2017): Practical improvement of pike (Esox lucius) sperm cryopreservation. Aquaculture Europe, Dubrovnik, Croatia, 17-20 in October, 2017. Abstract book 101–102.
Bernáth G., Csenki, Zs., Bokor, Z., Várkonyi L., Molnár, J., Szabó, T., Staszny, Á., Ferincz, Á., Szabó, K., Urbányi, B., Pap, L. O., Csorbai, B. (2018): The effects of different preservation methods on ide (Leuciscus idus) sperm and the longevity of sperm movement. Cryobiology, 81. 125–131. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2018.01.014
Bokor, Z., Urbányi, B., Horváth, L., Horváth, Á. (2010): Commercial-scale cryopreservation of wels catfish (Silurus glanis) semen. Aquaculture Research, 41. 1549–1551. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2009.02445.x
Bokor, Z., Ittzés, I., Mosonyi, G., Kotrik, L., Müller, T., Utbányi, B., Horváth, Á. (2015): Survival and growth rates of wels catfish (Silurus glanis Linneaus, 1758) larvae originating from fertilization with cryopreserved or fresh sperm. Journal of Applied Ichthyology, 31. 164–168. https://doi.org/10.1111/jai.12730
Bokor, Z., Bernáth, G., Levente, V., Molnár, J., Láng, L. Z., Tarnai-Király, Zs., Solymosi, E., Urbányi, B. (2019): The applicability of large-scale sperm cryopreservation in wels catfish (Silurus glanis) optimized for hatchery practice. Aquaculture, 506. 337–340. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.03.064
Bobe, J., Labbé, C. (2009): Chilled storage of sperm and eggs, in: E. Cabrita, V. Robles, P. Herráez (Eds.), Methods in Reproductive Aquaculture: Marine and Freshwater Species, CRC Press, New York, USA, 219–231. https://doi.org/10.1201/9780849380549.sec4
Bobe, J., Labbé, C. (2010): Egg and sperm quality in fish, General and Comparative Endocrinology, 165. 3. 535–548. https://doi.org/10.1016/j.ygcen.2009.02.011
Bondarenko, V., Blecha M., Policar T. (2018): Changes of sperm morphology, volume, density, and motility parameters in northern pike during the spawning period. Fish Physiology Biochemistry, 44. 2. https://doi.org/10.1007/s10695-018-0546-5
Cabrita E., Sarasquete C., Martínez-Páramo S., Robles V., Beirão J., Pérez-Cerezales S., Herráez M.P. (2010): Cryopreservation of fish sperm: applications and perspectives. Journal of Applied Ichthyology, 26. 623–635. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2010.01556.x
Cejko, B. I., Sarosiek, B., Dryl, K., Judycka, S., Szczepkowska, B., Szczepkowski, M., Kowalski, R. K. (2020): The effect of cryopreservation extender on sperm motility and hatch success in nortern pike (Esox lucius). Aquaculture, 514. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.734482
Dietrich G. J., Nynca J., Szepkowski M., Dobosz S., Szczepkowska B., Ciereszko A. (2016): The effect of cryopreservation of semen from whitefish (Coregonus lavaretus) and northern pike (Esox lucius) using a glucose-methanol extender on sperm motility parameters and fertilizing ability. Aquaculture, 464. 60–64. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2016.06.015
Fauvel C., Suquet, M., Cosson, J. (2010): Evaluation of fish sperm quality. Journal of Applied Ichthyology, 26. 636–643. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2010.01529.x
Hoar W., Randall D., Donaldson, E. M. (1983): Fish physiology, Volume IX B, Academic press, 477.
Horváth, Á., Urbányi, B. (2000): The effect of cryoprotectants on the motility and fertilizing capacity of cryopreserved African catfish Clarias gariepinus (Burchell 1822) sperm, Aquaculture Research, 31. 317–324. https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2000.00444.x
Horváth, Á., Miskolczi, E., Urbányi, B. (2003): Cryopreservation of common carp sperm. Aquatic Living Resources, 16. 457–460. https://doi.org/10.1016/S0990-7440(03)00084-6
Horváth, Á., Miskolczi, E., Mihálffy, Sz., Ősz, K., Szabó, K., Urbányi, B. (2007): Cryopreservation of common carp (Ciprinus carpio) sperm in 1.2 and 5 ml straws and occurrence of haploids among larvae produced with cryopreserved sperm. Cryobiology, 54. 241–257. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2007.02.003
Hulak M., Rodina M., Otomar L. (2008): Characteristics of stripped and testicular Northern pike (Esox lucius) sperm: spermatozoa motility and velocity. Aquatic Living Resources, 21. 207–212. https://doi.org/10.1051/alr:2008022
Lahnsteiner, F. (2000): Semen cryopreservation in the Salmonidae and in the Northern pike. Aquaculture Research 31. 245–258. https://doi.org/10.1046/j.1365-2109.2000.00452.x
Martínez-Páramo S., Horváth Á., Labbé C., Zhang T., Robles V., Herráez P., Suquet M., Adams S., Viveiros A., Tiersch T. R., Cabrita E. (2017): Cryobanking of aquatic species. Aquaculture, 472. 156–177. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2016.05.042
Migaud, H., Fontaine, P., Sulistyo, I., Kestemont, P., Gardeur, J. N. (2002): Induction of out-of-season spawning in Eurasian perch Perca fluviatilis: Effects of rates of cooling and cooling durations on female gametogenesis and spawning. Aquaculture, 205. 253–267. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00675-5
Miskolczi, E., Mihálffy, Sz., Patakiné Várkonyi, E., Urbányi, B., Horváth, Á. (2005): Examination of larval malformation in African catfish Clarias gariepinus following fertilization with cryopreserved sperm. Aquaculture, 247. 119–125. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2005.02.043
Szabó, T. (2016): A csuka biológiája és tenyésztése. Szent István Egyetem Kiadó. Gödöllő. 188.
Stoss, J. (1983): Fish gamete preservation and spermatozoan physiology 9. [In: Hoar et al. (eds.) Fish Physiology.] Academic Press. New York. New York. USA. 305–350. https://doi.org/10.1016/S1546-5098(08)60306-4
Reiczigel, J. Harnos, A., Solymosi, N. (2007): Biostatisztika: nem statisztikusoknak. Pars Kft. Nagykovácsi. 455.
Várkonyi, L., Bokor, Z., Molnár, J., Fodor, F., Szári, Z., Ferincz, Á., Staszny, Á., Láng, L. Z., Csorbai, B., Urbányi, B., Bernáth, G. (2019a): The comparison of two different extenders for the improvement of large-scale sperm cryopreservation in common carp (Cyprinus carpio). Reproduction Domestic Animals, 54. 639–645. https://doi.org/10.1111/rda.13383
Várkonyi, L., Bokor, Z., Ferincz, Á., Staszny, Á., Fodor, F., Szári, Zs., Urbányi, B., Molnár, J., Bernáth G. (2019b): The applicability of 10 ml cryotubes for sperm cryopreservation in a Hungarian carp landrace (Cyprinus carpio carpio morpha accuminatus), Agrártudományi Közlemények/Acta Agraria Debreceniensis, 2018/75. 5. 93–97. https://doi.org/10.34101/actaagrar/75/1653
Woynarovich, E., Woynarovich, A. (1980): Modified technology for elimination of stickiness of common carp Cyprinus carpio eggs. Aquaculture Hungarica, 2. 19–21.
Zhang J. J., Li S. Z., Tulake K., Yan, Q. P., Li, W. J. (2011): The effects of extenders and sperm-egg ratios on fertilizing ability of cryopreserved testicular sperm of northern pike (Esox lucius L.). Applied Ichtiology, 2. 1037–1040. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2010.01586.x
Letöltések
Megjelent
Folyóirat szám
Rovat
License
Copyright (c) 2020 Molnár József, Várkonyi Levente, Füzes-Solymosi Enikő, Birkó-Sulyok Zita Katalin, Izsák Tibor, Láng Levente Zete, Csenki-Bakos Zsolt
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
