Előkísérletek házi méh (Apis mellifera) genotipizálására és spermium mélyhűtésére

Szerzők

  • Tokár Alexandra Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar Állattenyésztés-tudományi Intézet, Gödöllő, Páter Károly u. 1.; NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet, Gödöllő
  • Stéger Viktor NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet, Gödöllő
  • Heltai Botond NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet, Gödöllő
  • Szepesi Kinga NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet, Gödöllő
  • Debnár Viktória Johanna NAIK Állattenyésztési, Takarmányozási és Húsipari Kutatóintézet, Herceghalom
  • Kerekes Andrea NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet, Gödöllő
  • Antal Anita Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar Állattenyésztés-tudományi Intézet, Gödöllő, Páter Károly u. 1.; NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet, Gödöllő
  • Bodó Szilárd Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar Állattenyésztés-tudományi Intézet, Gödöllő, Páter Károly u. 1.; NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet, Gödöllő; NAIK Állattenyésztési, Takarmányozási és Húsipari Kutatóintézet, Herceghalom

DOI:

https://doi.org/10.17205/SZIE.AWETH.2018.2.092

Kulcsszavak:

Mézelő méh, krajnai méh, mélyhűtés, sperma preparálás, genotipizálás

Absztrakt

A krajnai méh Kárpát-medencei állomány genetikai diverzitásának és tisztaságának felmérését kezdtük el genomikai alapon fejlesztett DNS markerek segítségével. A különböző családokban az anyák genotípusait STR markerek segítségével tudjuk meghatározni, és kiválasztani, mit érdemes hosszútávon ex-situ tárolni. A felolvasztott spermiumokkal méhanyák mesterségesen termékenyíthetők és visszaállíthatók, illetve irányított keresztezésekbe állíthatók az eltárolt vonalak. Ezért a herék spermiumainak kinyerésére és mélyhűtésére egy jól használható módszert kell kidolgoznunk. Kifejlesztettünk egy saját, sztereomikroszkópos preparálási módszert, az ivarsejteket a szeminális vezikulumból nyertük ki. A spermiumokat tartalmazó médiumot 2 percig 700g-vel centrifugáltuk, a felülúszót eltávolítottuk, és a csapadékot meghatározott mennyiségre hígítottuk, majd 3:2 arányban kevertük össze a krioprotektív anyagokkal (CPA): DMSO25%+BSS+tojássárgája; DMSO10%+BSS+tojássárgája, DMSO25%+Harbo+tojássárgája, DMSO10%+Harbo+tojássárgája. Megállapítottuk, hogy a DMSO-s keverék nem toxikus a spermiumok számára. A 10μl-nyi CPA-val kevert spermiumot 80μl hígítót, 10μl CPA-t tartalmazó 0,25μl-es műszalmákba töltöttük. Tört jégen történő inkubáció után a minták egyik felét közvetlenül a folyékony nitrogént tartalmazó tartályba helyeztük, a másik felét pedig programozható fagyasztógéppel 3 °C/perc sebességgel, -40 °C-ig hűtöttük. A felolvasztást 38,5°C-os vízfürdőben végeztük, majd a mintákat 38,5oC-on inkubáltuk 10 percig, majd a motilitást fázis kontraszt mikroszkóppal újból megvizsgáltuk. A 10%-os töménységű DMSO-s oldattal kevert spermiumok kivétel nélkül elpusztultak a fagyasztás során, míg a 25%-os koncentrációjú DMSO-s oldattal kevert spermiumok 80%-a (amelyeket programozott lassú hűtéssel fagyasztottunk) túlélte a kezelést, de a felolvasztást követően gyengébb motilitást mutattak.

Információk a szerzőről

  • Bodó Szilárd, Szent István Egyetem, Mezőgazdaság- és Környezettudományi Kar Állattenyésztés-tudományi Intézet, Gödöllő, Páter Károly u. 1.; NAIK Mezőgazdasági Biotechnológiai Kutatóintézet, Gödöllő; NAIK Állattenyésztési, Takarmányozási és Húsipari Kutatóintézet, Herceghalom

    levelezőszerző
    bodo.szilard@abc.naik.hu

Hivatkozások

Čeřovský, J. (1976): Metoda barvení kančích spermií pro morfologické hodnocení. Živoč. Výr., 21, 361–366.

Hopkins, B. K., Herr, C. (2010): Factors affecting the successful cryopreservation of honey bee (Apis mellifera) spermatozoa. Apidologie 41: 548–556. https://doi.org/10.1051/apido/20010006

Horváth, J., Szalai, T., Szalainé, M. E. (2013): Hazai Pannon méhünk 2. Méhészet 61 (5): 10–11.

Pritchard, J. K., Stephens, M., Donnelly, P. J. (2000): Inference of population structure using multilocus genotype data. Genetics, 155: 945–959. https://doi.org/10.1093/genetics/155.2.945

Pritsch, G. (2005): Kaposvári Méhésznapok. Szóbeli közlés

Zajácz, E., Donkó, K. S., Harka, L., Hidas, A., Horváth, J., Szalainé, M. E., Szalai, T. (2017): A pannon méh (Apis mellifera carnica pannonica) hazai génmegőrzése., 203–205. p. Génbanki kutatások régi haszonállataink védelmében Műhelytanulmányok a tudományos génmegőrzés tárgyköréből, Gödöllő

Wegener, J., Bienefeld, K. (2012): Toxicity of cryoprotectants to honey bee semen and queens. Theriogenology 77(3): 600–607. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2011.08.036

Letöltések

Megjelent

2018-12-10

Folyóirat szám

Rovat

Cikkek

Hogyan kell idézni

Előkísérletek házi méh (Apis mellifera) genotipizálására és spermium mélyhűtésére. (2018). Animal Welfare, Etológia és Tartástechnológia (AWETH), 14(2), 92-99. https://doi.org/10.17205/SZIE.AWETH.2018.2.092