Előkísérletek házi méh (Apis mellifera) genotipizálására és spermium mélyhűtésére
DOI:
https://doi.org/10.17205/SZIE.AWETH.2018.2.092Kulcsszavak:
Mézelő méh, krajnai méh, mélyhűtés, sperma preparálás, genotipizálásAbsztrakt
A krajnai méh Kárpát-medencei állomány genetikai diverzitásának és tisztaságának felmérését kezdtük el genomikai alapon fejlesztett DNS markerek segítségével. A különböző családokban az anyák genotípusait STR markerek segítségével tudjuk meghatározni, és kiválasztani, mit érdemes hosszútávon ex-situ tárolni. A felolvasztott spermiumokkal méhanyák mesterségesen termékenyíthetők és visszaállíthatók, illetve irányított keresztezésekbe állíthatók az eltárolt vonalak. Ezért a herék spermiumainak kinyerésére és mélyhűtésére egy jól használható módszert kell kidolgoznunk. Kifejlesztettünk egy saját, sztereomikroszkópos preparálási módszert, az ivarsejteket a szeminális vezikulumból nyertük ki. A spermiumokat tartalmazó médiumot 2 percig 700g-vel centrifugáltuk, a felülúszót eltávolítottuk, és a csapadékot meghatározott mennyiségre hígítottuk, majd 3:2 arányban kevertük össze a krioprotektív anyagokkal (CPA): DMSO25%+BSS+tojássárgája; DMSO10%+BSS+tojássárgája, DMSO25%+Harbo+tojássárgája, DMSO10%+Harbo+tojássárgája. Megállapítottuk, hogy a DMSO-s keverék nem toxikus a spermiumok számára. A 10μl-nyi CPA-val kevert spermiumot 80μl hígítót, 10μl CPA-t tartalmazó 0,25μl-es műszalmákba töltöttük. Tört jégen történő inkubáció után a minták egyik felét közvetlenül a folyékony nitrogént tartalmazó tartályba helyeztük, a másik felét pedig programozható fagyasztógéppel 3 °C/perc sebességgel, -40 °C-ig hűtöttük. A felolvasztást 38,5°C-os vízfürdőben végeztük, majd a mintákat 38,5oC-on inkubáltuk 10 percig, majd a motilitást fázis kontraszt mikroszkóppal újból megvizsgáltuk. A 10%-os töménységű DMSO-s oldattal kevert spermiumok kivétel nélkül elpusztultak a fagyasztás során, míg a 25%-os koncentrációjú DMSO-s oldattal kevert spermiumok 80%-a (amelyeket programozott lassú hűtéssel fagyasztottunk) túlélte a kezelést, de a felolvasztást követően gyengébb motilitást mutattak.
Hivatkozások
Čeřovský, J. (1976): Metoda barvení kančích spermií pro morfologické hodnocení. Živoč. Výr., 21, 361–366.
Hopkins, B. K., Herr, C. (2010): Factors affecting the successful cryopreservation of honey bee (Apis mellifera) spermatozoa. Apidologie 41: 548–556. https://doi.org/10.1051/apido/20010006
Horváth, J., Szalai, T., Szalainé, M. E. (2013): Hazai Pannon méhünk 2. Méhészet 61 (5): 10–11.
Pritchard, J. K., Stephens, M., Donnelly, P. J. (2000): Inference of population structure using multilocus genotype data. Genetics, 155: 945–959. https://doi.org/10.1093/genetics/155.2.945
Pritsch, G. (2005): Kaposvári Méhésznapok. Szóbeli közlés
Zajácz, E., Donkó, K. S., Harka, L., Hidas, A., Horváth, J., Szalainé, M. E., Szalai, T. (2017): A pannon méh (Apis mellifera carnica pannonica) hazai génmegőrzése., 203–205. p. Génbanki kutatások régi haszonállataink védelmében Műhelytanulmányok a tudományos génmegőrzés tárgyköréből, Gödöllő
Wegener, J., Bienefeld, K. (2012): Toxicity of cryoprotectants to honey bee semen and queens. Theriogenology 77(3): 600–607. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2011.08.036
Letöltések
Megjelent
Folyóirat szám
Rovat
License
Copyright (c) 2018 Tokár Alexandra, Stéger Viktor, Heltai Botond, Szepesi Kinga, Debnár Viktória Johanna, Kerekes Andrea, Antal Anita, Bodó Szilárd
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.